急性白血病免疫分型检测-流式细胞术应用(一)
急性白血病是起源于造血干细胞的恶性克隆疾病，发病时骨髓中异常的原始细胞及幼稚细胞(白血病细胞)大量增殖并抑制正常造血，可广泛浸润肝、脾、淋巴结等各种脏器。患者主要表现为贫血、出血、感染和浸润等症状。急性白血病可分为急性淋巴细胞白血病和急性髓系白血病两大类。
在我国急性淋巴细胞白血病的发病率约为0.69/10万人，较常见于儿童、青少年，急性髓系白血病约为1.62/10万人，较常见于成年人。急性白血病患者如果不接受系统正规的治疗，平均生存期仅3个月左右。并且治疗比较困难，且复发率比较高，大约有1/3的患者治疗达到完全缓解后会出现复发。不同类型的患者复发比例也并不相同，因为白血病的预后与白血病分型存在密切关系。
急性白血病免疫分型的临床意义
有助于正确鉴别急性白血病类型，可帮助临床医生选择最佳的治疗方案及对患者预后进行正确评估。
有助于临床医生根据预后将患者分为低危、中危、高危，可实现急性白血病的分层治疗。
有助于临床医生定期检测急性白血病患者微小残留病灶，可尽早发现疾病复发，从而对患者进行早期干预，提高急性白血病患者的无事件生存率。
急性白血病免疫分型的免疫标志选择
流式细胞术诊断急性白血病常用标志分为基本免疫标志(表1)和可选标志(表2)，并包括罕见类型如原始浆细胞样树突状细胞肿瘤。
资料来源于：中国中西医结合学会检验医学专业委员会. 急性白血病系别判断的流式细胞免疫分型专家共识[J]. 中华检验医学杂志,2021,44(12):1113-1125.
鉴于几乎没有任何标志是绝对敏感和特异的，做全标志有助于降低误诊风险，因此在系别筛查时如果出现系别标志表达过多或者过少，或者伴系表达标志的强度超过标本中残留的正常细胞时，首先应该做全两个诊断标准涉及的相关系别标志，必要时甚至需要增加CD371等新的髓系标志。在此过程中可以选择一步法或者两步法。选择一步法的实验室，以目前常用3激光8色机型为例，可供参考的5管法见表3；选择两步法的实验室，第一步进行系别筛查，包括髓系MPO(或者(CD33)和CD117，T系CD7和cCD3、B系CD19和CD22，根据采用仪器型号不同可能有差异，3激光8色推荐方案见表3。
资料来源于：中国中西医结合学会检验医学专业委员会. 急性白血病系别判断的流式细胞免疫分型专家共识[J]. 中华检验医学杂志,2021,44(12):1113-1125.
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名称 |
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货号 |
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CD4 |
APC-Cy7 |
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APC-Cy7 |
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APC |
50T/100T |
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CD5 |
APC |
50T/100T |
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50T/100T |
A03000203/A03000204 |
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APC |
50T/100T |
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APC |
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APC |
50T/100T |
A01800203/A01800204 |
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CD79a |
APC |
50T/100T |
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CD303 |
APC |
50T/100T |
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CD4 |
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50T/100T |
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CD13 |
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PE-Cy7 |
50T/100T |
A02600503/A02600504 |
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CD2 |
PE |
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50T/100T |
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PE |
50T/100T |
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50T/100T |
A02600103/A02600104 |
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CD2 |
FITC |
50T/100T |
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参考文献
[1]葛均波, 徐永健, 王辰. 内科学第9版[M]. 人民卫生出版社, 2018, 569-577.
[2]中国中西医结合学会检验医学专业委员会. 急性白血病系别判断的流式细胞免疫分型专家共识[J]. 中华检验医学杂志,2021,44(12):1113-1125.
[3]Patel SS, Weinberg OK. Diagnostic workup of acute leukemias of ambiguous lineage[J]. Am J Hematol, 2020, 95(6):718‑722.
[4]Arber DA, Orazi A, Hasserjian R, et al. The 2016 revision to the World Health Organization classification of myeloid neoplasms and acute leukemia[J]. Blood, 2016, 127(20):2391‑2405.
[5]Vardiman JW, Thiele J, Arber DA, et al. The 2008 revision of the World Health Organization (WHO) classification of myeloid neoplasms and acute leukemia: rationale and important changes[J]. Blood, 2009, 114(5):937-951.
[6]中国免疫学会血液免疫分会临床流式细胞术学组. 四色流式细胞术用于急性白血病免疫分型的中国专家共识(2015年版)[J]. 中华血液学杂志, 2015, 36(4):265-271.
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